1. ВВЕДЕНИЕ
С переводом животноводства на промышленную основу и созданием крупных специализированных хозяйств с высокой концентрацией животных болезней глаз приобретают массовый характер. Эти заболевания наносят значительный экономический ущерб животноводческим хозяйствам: суточные привесы снижаются на 31—37%, удои на 50%. Племенные хозяйства не могут продавать многих телок «следствие частичной или полной потери зрения. Кроме того, в период массового распространения болезни требуются дополнительные затраты на фиксацию, содержание и лечение больных животных и проведение профилактических мероприятий. Поэтому внимание ученых и ветеринарных работников должно быть направлено на разработку новых лечебно-профилактических мероприятий, способствующих ликвидации керато-конъюнктивитов и повышению эффективности ведения животноводства.
В целях профилактики и успешного лечения керато-конъюнктивитов в первую очередь необходимо своевременно диагностировать и дифференцировать болезни.
2. ЭТИОЛОГИЯ
Возбудители риккетсиозного керато-конъюнктивита риккетсии — внутриклеточные паразиты шаровидной, яйцевидной, палочковидной, гантелеобразной и др. форм (Rickettsia conjunctiva е bovis) —чаще локализуются в цитоплазме эпителиальных клеток конъюнктивы и роговицы.
Возбудители инфекционного керато-конъюнктивита диплобациллы (Mioraxella bovis) постоянно находятся в конъюнктивальном мешке здоровых и больных животных в неблагополучных хозяйствах.
Первый вид возбудителей инвазионного керато-конъюнктивита телязиоза (Thelasia rodesia) локализуется в конъюнктивальном мешке и под третьим веком, два других вида (Th. gulosa, Th. skrjbini) — в выводных протоках слезных желез.
Возбудителем инфекционного ринотрахеита является герпес-вирус.
3. ДИАГНОСТИКА КЕРАТО-КОНЪЮНКТИВИТОВ
Диагноз на заболевание ставят на основании эпизоотологических данных, клинической картины и лабораторных исследований.
3.1. Клиническая картина риккетсиозного керато-конъюнктивита
Риккетсиозным керато-конъюнктивитом преимущественно болеет молодняк с двухмесячного возраста. Болезнь часто принимает характер энзоотии и поражает ЭО—90% поголовья стада. Заболевание постоянно, наблюдается в течение года, но наибольшего распространения достигает в пастбищный период.
Источникам инфекции являются больные и переболевшие животные. Передача инфекции происходит путем контакта и мухами. Инкубационный период 3—12 дней, в зависимости от состояния индивидуальной реактивности, условий содержания и кормления. Заболевание начинается остро. Общее состояние животных угнетенное, особенно при поражении обоих глаз; температура, пульс, дыхание в пределах нормы. Животные плохо поедают корм, отстают в росте.
Установлено 6 характерных стадий развития болезни. Первая стадия представляет собой серозно-катаральный конъюнктивит, характеризуется слезотечением и выделением серозного экссудата, отеком и гиперемией конъюнктивы при умеренном спазме век и угнетении животных. При естественном переболевании ее продолжительность 2—6 дней.
Во второй стадии происходит эрозирование роговицы, о чем свидетельствует нарушение ее зеркальности. Эрозия диаметром 2—4 мм появляется в центре роговицы, она серо-голубого цвета. Края отечные, неровные. Остальная часть роговицы прозрачная. Состояние животного угнетенное. Отмечается светобоязнь, обильное истечение серозно-слизистого экссудата, смешанная инъекция сосудов. Длительность стадии 2—4 дня. В последующем эта стадия переходит в язву с одновременной инфильтрацией роговицы.
Третья стадия клеточной инфильтрации характеризуется угнетенным состоянием животного, отказом от корма, исхуданием. Животные ищут затемненные места, малоподвижны. Отмечают светобоязнь, обильное выделение слизисто-гнойного экссудата, гиперемию и отек, конъюнктивальную и перикорнеальную инъекции. Роговица вначале серо-голубого, а затем дымчатого или молочно-белого цвета с желтоватым оттенком. Смешанная васкуляризация. Продолжительность этой стадии 7—14 дней.
В четвертой стадии (встречается у животных редко) характерно созревание абсцесса роговицы. В центре роговицы образуется ограниченное, полусферическое возвышение, желтоватого цвета, окруженное сосудами. Признаки воспаления резко выражены. Отмечается повышение общей температуры тела животного на 1— l,5° С.
В пятой стадии наблюдают изъязвление роговицы, (возникающее на фоне инфильтрации и эрозии роговицы. Обильное слезотечение, выделение слизистого или слизисто-гнойного экссудата, светобоязнь, отек век, сильная боль при пальпации, значительная гиперемия и отек конъюнктивы, смешанной инъекции сосудов. В центре инфильтрированной роговицы обнаруживают шву различной величины и глубины. Продолжительность этой стадии 6—12 дней.
В шестой стадии происходит гранулирование, рубцевание и эпителизация. Воспалительные явления стихают, инфильтрат рассасывается от лимба к центру роговицы, где «начале образуется гранулема; в дальнейшем она уплотняется, сосуды частично или полностью облитерируются и на роговице остается соединительно-тканный рубец (лейкома, нубекула или макула). Процессы формирования рубца протекают медленно и длительно. Переход в эту стадию может совершаться из III , IV и V стадий. Рубец в той или иной степени нарушает зрение и без лечения не рассасывается.
3.2. Клиническая картина инфекционного керато-конъюнктивита
Инфекционным керато-конъюнктивитом, вызываемым М. bovis, болеют телята с 2—З дневного возраста, но наиболее восприимчив молодняк 3—6 месяцев. В течение пастбищного периода переболевает 30—70% поголовья стада. Заболевание стационарное.
Источником инфекции являются здоровые и больные животные, так как М. bovis постоянно находится в конъюнктивальном мешке, и при неблагоприятных условиях микроб становится патогенным, вызывая заболевание глаз. Передача инфекции происходит контактным путем и мухами. Инкубационный период 3—5 дней. Болезнь может протекать сверхостро, остро и хронически. Острое течение сходно с риккетсиозом глаз. Вначале (возникает катаральный конъюнктивит, затем — эрозия роговицы, или юле точная инфильтрация, после чего образовывается язва роговой оболочки. При благоприятном течении процесс заканчивается рубцеванием и образованием рубца различной плотности.
При сверхостром течении болезни общее состояние животного угнетенное, температура повышенная на 1—2 С, отказ от корма. Как правило, поражаются оба глаза. Наблюдают обильное слезотечение, светобоязнь, выраженную гиперемию конъюнктивы век и склеры, перикорнеальную инъекцию. Болезненность при пальпации. На роговице (быстро возникает гнойно-некротическая язва до десцеметовой оболочки, затем наступает ее прободение. Одновременно образуется панус (красный глаз). Таких животных вынужденно убивают, либо они гибнут.
3.3. Клиническая картина при инвазионном керато-конъюнктивите (телязиоз)
Телязиозом более как взрослый скот, так и молодняк. Заражают животных мухи-коровницы.
Наибольший процент заболевших в июле-августе-сентябре. Инкубационный период 12—14 дней после заражения.
По клинической картине телязиоз схож с риккетсиозом глаз. Вначале развивается серозно-катаральный, реже гнойный конъюнктивит, сопровождающийся слезотечением, выделением серозно-слизистого или гнойного экссудата. Отмечают блефароспазм, гиперемию, отек конъюнктивы. Затем через 2—3 дня в центре роговицы или нижней ее части появляются 1—3 эрозии. При поражениях микрофлорой конъюнктивального мешка развивается клеточная инфильтрация роговицы или гнойная язва.
3.4. Инфекционный ринотрахеит (глазная форма)
Инфекционный ринотрахеит часто сопровождается конъюнктивитом и кератитами. Возбудителем является герпес вирус. Восприимчив молодняк крупного рогатого окота. Источником возбудителя инфекции могут быть больные и переболевшие животные. Заболевание наблюдается круглый год, но наиболее распространено в весенне-летний период.
При заболевании общее состоящие животных угнетенное, повышается температура в перовые 3—4 дня до 40—41,5°С. Пульс и дыхание учащенны, при вставании после отдыха животные кашляют, они тяжело дышат, широко открыв рот, вытянув шею и голову. Из носовых отверстий выделяется слизисто-гнойный экссудат. Поражение глаз такое же, как при риккетсиозе. Вначале возникает катаральный конъюнктивит, затем эрозия или негнойная язва роговицы, а при осложнениях — клеточная инфильтрация, гнойная и прободная язва роговицы.
4. ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА
4.1. При риккетсиозном керато-конъюнктивите берут соскобы с конъюнктивы и роговицы для вирусологических исследований небольшой металлической ложечкой, употребляемой в быту для взятия горчицы, или несколько притуплённой ложкой Фолькмана. Предварительно в конъюнктивальный мешок закапывают 5%-ный раствор новокаина или 0,5%-Ный раствор дикаина. Через 2—3 мин шире раскрывают глазную щель и скользящими движениями при легком нажатии на конъюнктиву и роговицу краем 1 ложки берут с разных неповрежденных участков конъюнктивы и роговицы несколько соскобов, равномерно тонким слоем размазывают их на обезжиренном предметном стекле. Полученные мазки подсушивают на воздухе, фиксируют метанолом или смесью Никифорова (этиловый спирт и эфир .поровну) 1 в течение 15 мин и окрашивают каждый одним из трех способов: по Романовскому-Гимза, Зотову-Блинову или Муромцеву.
Окраска соскобов по Романовскому-Гимза. Приготовленную краску Романовского-Гимза разводят дистиллированной или кипяченой водой при рН=6,8—7,0 из расчета 1—1,5 капли на 1 мл воды. Предметные стекла с нанесенными мазками помещают в фарфоровые фиксашки, в которые наливают раствор до полного покрытия мазков. Через 2—3 ч мазки извлекают, тщательно промывают в течение 1— 2 мин и высушивают фильтровальной бумагой или на воздухе.
Окраска по Зотову-Блинову. Мазок, высушенный на воздухе, фиксируют над пламенем в течение нескольких секунд.
Для приготовления рабочего раствора непосредственно перед употреблением к 1 мл карбол-фуксина Цилия добавляют 1,5—2 мл дистиллированной воды; в полученный раствор вносят 1—3 (капли 1 %-ногo раствора углекислого натрия до появления легкого помутнения и более яркой окраски раствора. Приготовленным раствором покрывают мазок. Через 7—8 мин смывают краску, затем в течение 10—30 сек. ополаскивают 0,-25%-ным раствором малахитовой зелени, промывают водой и высушивают на воздухе.
Окраска по Муромцеву. Готовят красящий раствор.
В первый флакон вносят 10 г кристаллической карболовой кислоты, 0,15 г основного фуксина и 20 мл 96%-ного спирта; во второй — 2,5 г метиленовой синьки и 200 мл дистиллированной воды. Оба флакона оставляют при комнатной температуре (18—20° С) на 24—48 ч до полного растворения красок. Затем содержимое фильтруют через двойной бумажный фильтр, соединяют вместе и используют для окраски. Фиксированные спирт-формалином или жидкостью Корнуа мазки заливают на 0,6—1 мин, промывают водопроводной водой и высушивают, как указано выше.
В окрашенных мазках риккетсии обнаруживают чаще в цитоплазме эпителиальных клеток, реже вне их, вблизи «голых ядер», в виде кокковидных, эллипсоидных и палочковидных включений. При окраске по Романовскому-Гимза они приобретают темно-синий цвет, по Зотову — Блинову — ярко-красный, по Муромцеву — ярко-синий цвет.
В мазках-соскобах, полученных при первой серозно-катаральной стадии риккетсиозного керато-конъюнктмвита, риккетсии обнаруживают не всегда и не у всех больных. Поэтому необходимо брать соскобы повторно. Для уточнения диагноза нативным материалом соскоба заражают по Коксу 6-дневные куриные эмбрионы. При наличии риккетсий эмбрионы погибают на 12—14-й день. В стерильных условиях отмывают содержимое желточного пузыря от ело оболочки, делают с нее мазки, которые окрашиваются по Романовскому-Гимза. Наличие в мазках элементарных частиц (риккетсии) подтверждает диагноз.
4.2. При телязиозе с целью обнаружения взрослых телязий и личинок используют метод ирригации конъюнктивальных мешков изотоническим pacтвором хлорида натрия из спринцовки. Для промывания одной конъюнктивальной полости берут 75—100 мл раствора; затем его собирают, сливают в почкоообразную кювету, просматривают в чашках Петри на темном фоне и отстаивают. Верхний слой сливают, а нижний центрифугируют. Полученный осадок исследуют под микроскопом. Нахождение лоловозрелых тел язи их личинок позволяет поставить диагноз на наличие Th. rodsia, Th. gulosa, Th. skrjbini .
Для групповой постановки диагноза промывающий раствор необходимо собрать от 15—20 животных.
При отправке материала в лабораторию нижний слой раствора с осадком в объеме 100—150 мл следует слить во флакон и законсервировать 1—1,5 мл формалина.
Проводят посмертную диагностику телязиозов после убоя животных. Делают круговой разрез кожи по краю глазницы, около наружного угла глазной щели отпрепаровывают прилегающие к глазнице ткани. Верхнее и нижнее вежи полностью разрезают на середине. Надрезают с обеих сторон у основания третьего века. Выворачивают веки, осматривают конъюнктивальные полости и отверстия выводных протоков слезных желез. Затем вскрывают первые три протока (считав от внутреннего угла глаза) слезной железы верхнего века и все протоки железы третьего века. Весной, в начале лета и осени, когда телязии и паразитируют в личиночной стадии, их трудно Обнаружить в протоках невооруженным глазом, поэтому нужно делать соскоб со слизистой протоков после их вскрытия. Соскобы 6 помещают в изотонический раствор хлорида натрия, осадок которого следует тщательно просматривать с помощью лупы или микроскопа.
При исследовании на телязиоз слезных желез (не более двух суток после убоя), их следует сразу же после отделения поместить в чашки Петри с подогретым физиологическим раствором и оставить на 10—15 мин. За это время все живые телязии выходят из слезных протоков. Наиболее активно этот процесс происходит при температуре раствора 25— 30° С.
Для исследования слезных желез на наличие личинок можно использовать и метод Бермана. Осадок, полученный после отстаивания или центрифугирования, микроскопируют.
4.3. При инфекционном керато-конъюнктивите, вызываемым М. bovis, ранее обносимой к роду Haemophilus , Обычно обнаруживают возбудитель в конъюнктивальном мешке и носовых выделениях. Для установления его берут материал из конъюнктивального мешка, высевают на 5%ный кровяной агар, который помещают в термостат при температуре 37° С. Через сутки на кровяном агаре при рН = 7,2—7,5 микроорганизмы образуют круглые, прозрачные серо-белые колонии диаметром 1 —2 мм. На МПБ и MПА микроб дает скудный рост. После приготовления мазко их окрашивают по Граму. При микроскопии обнаруживают двойные палочковидные -микроорганизмы. Они образуют капсулу, неподвижные, неспорообразующие, грамотрицательные, диаметром 0,5—1,0 мкм, длиной 1,6—2,0 мкм. Располагаются парами, хотя имеют короткие цепочки. Микроорганизмы не ферментируют обычные сахара, нитраты не восстанавливают до нитритов. В лакмусовой среде с молоком через 7 дней инкубации появляются три зоны: верхняя — темно-голубого цвета, средняя — лилового, типа сыворотки, нижняя — на дне бледно-малинового цвета с конгломератами казеина.
4.4. При инфекционном ринотрахеите (глазная форма) диагноз ставят на основании эпизоотологических, клинических, патолого-анатомических данных с учетом результатов бактериологических и вирусологических исследований.
В лабораторию для бактериологического и вирусологического исследования 1 направляют патологический материал от больных, вынужденно убитых или павших животных, взятый не позднее чем через 2 ч после их гибели. От больных животных, в период максимального проявления у них клинических признавав, берут тампонам пробы слизи, соскобы и смывы из носовой полости, конъюнктивы и др. для реакции иммунофлуоресценции и для выделения возбудителя, пробы крови — для выявления в ней титра антител, мазки-отпечатки и соскобы с конъюнктивы и роговицы — для определения .включений вируса в эпителиальные клетки после их окраски по Романовскому-Гимза.
Тампоны с материалом помещают в пенициллиновые флаконы с 2—5 мл питательной среды для культуры клеток или раствора Хенкса, содержащие 1000 ЕД/мл пенициллина и 1000 мкг стрептомицина. Кровь в объеме не менее 5 мл берут в пробирки от 10—\Ъ больных и переболевших животных; после свертывания доставляют в лабораторию. Для исследования пригодны свежие сыворотки крови, полученные в начале заболевания и через 18—21 день.
Лабораторная диагностика заключается в обнаружении патологическом материале методами иммунофлуоресценции, реакции связывания комплемента, реакции диффузной преципитации и выделения возбудителя из патологического материала в культуре клеток или на куриных эмбрионах и
его идентификации в одной из серологических реакций; выявление антител в крови больных и переболевших животных в одной из серологических реакций; реакции непрямой гемагглютинации и др. В мазках соскобов с конъюнктивы и роговицы, окрашенных по Романовскому-Гимза, в цитоплазме эпителиальных клеток обнаруживают включения вируса, отличающиеся от рикетсий формой и величиной (в виде точек с ореолом), темно-синего цвета.
5. ЛЕЧЕНИЕ
5.1. При риккетсиозном керато-конъюнктивите было испытано большое количество лекарственных препаратов и способов. На основании данных литературы положительным лечебным эффектом обладают антибиотики и сульфаниламиды в виде порошков, эмульсий и мазей. Водные растворы и кашли при массовых заболеваниях глаз для лечения неприемлемы, т. к. для получения терапевтической концентрации необходимо закапывать их 6—8 раз в сутки.
Получен хороший лечебный эффект от .применения (1—2 раза в сутки) сложного порошка, состоящего из равных частей биомицина, синтомицина и пенициллина.
Предложены и испытаны для лечения и профилактики олететриновая, дибиомициновая и дитетрациклиновая мази, 5—10%-ная синтомициновая эмульсия. Менее эффективной является тетрациклиновая мазь. Установлена высокая эффективность 15%-мой прополисовой мази. Глазные мази и эмульсии необходимо применять 2—3 раза в сутки. Высокоэффективной оказалась ретробульбарная новокаиновая блокада по В. Н. Авророву в сочетании с 10%-ной синтомициновой эмульсией, либо с 30%-ной сульфацил-натриевой мазью. Блокаду проводят 1—2 раза через 5—6 дней.
Для рассасывания рубцовых помутнений (6-я стадия) с успехом и хорошим результатом применяют аутогемотерапию по 5—10 мл крови под кожу верхнего и нижнего века, пирогенал, бета излучение радиоактивного фосфора-32, взвесь плаценты и др.
Несмотря на то, что для лечения заболеваний глаз были предложены различные методы и средства, многие из них в настоящее время не удовлетворяют ветеринарную практику. Поэтому ученые Г. Л. Хромов, Ю. Ф. Майчук (отдел клинической вирусологии ВНИИ глазных болезней им. Гельмгольца) и Е. П. Копенкин (MBA) разработали и испытали глазные лекарственные (пленки для лечения и профилактики риккетсиозного и других керато-конъюнктивитов.
Основой глазных лекарственных пленок (ГЛЛ) является растворимый сополимер, в который вводят различные лекарственные препараты. Оптимальные размеры пленок для коров и телят: длина 8— 9 мм, ширина — 4,5 мм и толщина — 0,35 мм. По внешнему виду они овальной формы, с притуплёнными краями, твердые, массой до 15 мг.
Дли лечения риккетсиоза глаз предложены и испытаны главные пленки с неомицином 1— 0,001 г/пл., канамицином— 0,001 г/пл., сульфапирздазином натрия — 0,0052 г/пл., канадексоном (канамицин — 0,001 г/пл., дексазон— 5 мкг/пл.).
Техника введения ГЛП в конъюнктивальный мешок довольно проста. После фиксации животного оттягивают пяльцами нижнее веко, затем анатомическим пинцетом пленку вводят как можно глубже в конъюнктивальный мешок, отпускают веко и вынимают пинцет. После введения ГЛП омачивается слезой и прилипает к конъюнктиве. Через 20— 30 мин пленка превращается в вязкий сгусток полимера, который полностью растворяется через 60—70 мин, образуя полимерный раствор, содержащий лекарственное вещество, равномерно распределяется по конъюнктиве век и глазного яблока, в виде тонкой жидкой пшенки. При попадании полимера на роговицу у животного отмечается кратковременное учащение мигания век и слезотечение.
Экспериментальными исследованиями установлено, что полимерная основа пролонгирует действие препарата до 48—72 ч, способствует накоплению его в конъюнктиве, роговице и жидкости передней камеры. Полимерная основа усиливает проницаемость гемагоофтальмического барьера и клеточных мембран для неомицина, канамицина, сульфацилпиридазина и др. препаратов, что обеспечивает длительное поддержание высокой терапевтической концентрации препарата в тканях переднего отрезка глаза. Исходя из этого, мы рекомендуем применять ГЛП с интервалом 48 ч.
В результате применения ГЛП по стадиям болезни установлено, что при серозно-катаральной стадии, эрозии роговицы и поверхностных язвах достаточно 1—2-кратного применения пленок. Выздоровление наступает на 2—4-й день. При клеточной инфильтрации и изъязвлении роговицы требуется 4—8 кратное применение пленок. Выздоровление животных наступает на 8—-16-й день.
Для рассасывания рубцов испытаны и предложены ГЛП с химотрипсином — (5 мг/пл). Эффективность препарата — 87,5%.
Хорошие лечебные показатели получены в результате применения ГЛП с антибиотиками, сульфаниламидами в сочетании с аутогемотерапией. Кровь вводят по 5—10 мл под кожу верхнего века 1 раз -в 6 дней и ГЛП через 3 дня. Как правило, »а роговице не остается рубцов помутнения.
5.2. При инфекционном керато-конъюнктивите больных животных изолируют и помещают в прохладные помещения. Применяют местное лечение антибиотиками и сульфаниламидами: ежедневно — порошок сульфатизола, мази, содержащие антибиотики, аэрозоль (берлицетина, субконъюнктивальной — гидрокортизон, дексазон или преднизолон. Глазные пленки с сульфапиридазином натрия. Внутримышечно вводят стерильное молоко, сыворотку крови, липопротеины, тривитамин.
5.3. При инвазионном керагго-конъюнктивите противотелязиозньим свойством обладает 0,75%-иый раствор йода на 70%-ном спирте, 3%-ный ихтиол на рыбьем жире, 0,4%-иый йодный раствор тимола, 5%-на1Я ихтиоловая мазь, 4%-1Ньгй раствор фтористого натрия, 3%-1ный лизол, 1%-ная желтортутная мазъ. Высокое антигельминтное действие дитразина-основания и дитразина-цитрата при однократном введении его в (периорбитальное пространство в дозе 12—17 мл/кг, в разведении 1:4. При подкожном введении в область шеи наиболее эффективная доза 9— l4 мг/кг в разведении 1:1,5 двукратно.
Для лечения послетелязиоаных осложнений необходимо вдувать порошок ориприма 1—2 раза в сутки, глазные мази с антибиотиками (олететриновая, тетрациклиновая, хлортетрациклиновая и др.), 1%-ную желто-ртутную, 10%-ную сульфацил-натриевую мази и др.
Хорошее антигельминтное и лечебное свойство, глазных пленок с дитразином-цитратом (5 мг/пл.) в сочетании с неовитином (1 мг/пл); для выздоровления животных достаточно применить ежедневно 1—3 раза в начальных стадиях болезни и 3—7 — при язвах роговицы.
5.4. При инфекционном ринотрахеите местно применяют глазные мази с антибиотиками и сульфаниламидами, субконъюнктивальные инъекции гидрокортизона в дозе 0,3—0,5 мл с 1—2 мл 0,5%-ным раствором новокаина и глазные пленки с флореналью в сочетании с сульфопиридазином натрия 5,2 мг/пл.
Наряду с местным лечением конъюнктивитов и кератитов рекомендуется общее лечение. Применяют антибиотики внутримышечно: метициллин, оксициллин, ампициллин, гентамицин и др. При тяжелом течении болезни необходимо попользовать внутривенное введение антибиотиков (олеандомицин, олеморфоциклин и др.). Следует отметить, что каким бы широким спектром не обладали избранные для лечения антибиотики, их терапевтические возможности всегда зависят от состояния макроорганизма, поэтому особое место в лечении животных отводится неспецифическим методам воздействия на воспалительный очаг и реактивность организма. С этой целью можно использовать нитрированную кровь «Гемобиостимулятор», который вводят под кожу верхнего (века по 5—10 мл с интервалом 6—7 дней, либо внутримышечно в дозе 0,3—0,5 мл на 1 кг. массы животного. Инъекции повторяют через 3 дня.
Назначают витаминотерапию: витамин А внутрь ежедневно в дозе 30—50 тыс. ИЕ., витамин Д один раз в 5 дней по 40—50 тыс. ИЕ. Витамин С вводят внутривенно по 0,1— 0,2 г в разведении 1:10 в 10—20%-ном растворе глюкозы или изотоническом растворе хлорида натрия.
6. МЕРЫ БОРЬБЫ С КЕРАТО-КОНЪЮНКТИВИТАМИ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
6.1. Общая профилактика
6.1.1. Профилактика керато-конъюнктивитов у телят и взрослого скота (включает комплекс организационно-хозяйственных и специальных зооветеринарных мероприятий, направленных на соблюдение зоогигиенических нормативов содержания .и кормления животных, повышение общей неспецифической резистентности организма и снижение патогенного воздействия на телят различных возбудителей.
Учитываются также природно-климатические особенности зоны и специализация хозяйства.
6.1.2. Профилактика болезней глаз основана на обеспечении хороших условий содержания, полноценного кормления, соблюдения условий отбора, транспортировки телят в специализированные хозяйства и комплексы, размещения в них и дальнейшего выращивания, своевременного проведения противоэпизоотологических и профилактических обработок окота.
В животноводческих помещениях необходимо создавать оптимальный миикроклимат, соответствующий возрастной группе животных. Телят ловле профилактического периода до 3—4-месячного возраста разместить в теплых, сухих ложе, из опилок или соломенные подстилок.
B послепрофилакторный период необходимо оборудовать около всех телятников выгульные дворы, чтобы животные прогуливались. В загонах летних лагерей для телят до 3—4-месячного возраста, строят теневые навесы.
6.2. Частная профилактика
6.2.1. Для своевременного выявления больные животных и полного проведения профилактических и лечебных мероприятий надо регулярно проводить клиническое обследование животных в технологическом цикле производства.
6.2.2. Использование специальных премиксов, содержащие витаминные и минеральные компоненты, введение в рацион животных витаминов А, Д, Е, группы В внутримышечно, гамм а-глобулин а и других стимулирующих средств имеют важное значение в повышении естественной резистентности и иммунологической устойчивости организма.
6.2.3. В условиях промышленного животноводства для предупреждения керато-конъюнктивитов используют ультрафиолетовое излучение, инфракрасный обогрев животных и др.
6.2.4. При комплектовании хозяйств телятами из хозяйств-поставщиков необходимо руководствоваться следующими правилами:
— комплектование комплексов проводить из минимального числа хозяйств-поставщиков;
— отбор телят в комплекс проводить ветврачами спецхоза, с их контролем за транспортировкой;
— комплектовать комплексы только клинически здоровыми животными и при достижении установленной массы телят и возраста;
— перед транспортировкой и в первые дни поступления в комплекс проводить противострессовые обработки введение витаминов, глюкозы, транквилизаторов и др.);
— длительность транспортировки животных в оборудованных автомашинах или фургонах-скотовозах не должна превышать 5—6 ч;
— телят следует содержать в течение 15— 20 дней после доставки в условиях карантина с предварительной санитарной обработкой IB первый день прибытия;
— регулярно проводить санацию телятников, а при заполнении строго придерживаться принципа «все занято — все свободно».
6.2.5. Профилактическую дезинфекцию и дезинсекцию помещений проводят в отсутствие животных влажным методом одним из следующих средств: 2%-ным раствором натрия едкого с добавлением 1 %-ного хлорофоса; раствором извести хлорной с содержанием 2% активного хлора, 1 %-ным раствором 1 формальдегида, 5%-ным раствором соды кальцинированной;
После дезинфекции помещение закрывают на 3—4 ч, затем проветривают. Стены, перегородки, потолочные перекрытия, столбы белят 15—20% -ной водной взвесью свежегашеной извести. Затем помещение просушивают и готовят для ввода животных.
6.2.6. После каждого цикла выращивания телят помещение моют, дезинфицируют, белят, сушат. Секцию профилактория оставляют свободной от животных в течение не менее 3 дней.
6 3. Местная и специфическая профилактика
6.3.1. Специфическая профилактика при риккетсиозном керато-конъюнктивите не разработана.
Условно здоровым животным с профилактической целью начиная с марта по сентябрь в конъюнктивальный мешок вводят глазные мази (олететриновую, хлортетрациклиновую, дибиомициновую и дитетрациклиновую) и 10%-ную синтомициновую эмульсию 1 раз в 10 дней в течение пастбищного периода или глазные пленки с неомицином, канамицином или сульфапиридазином натрия 1 раз в 30 дней.
6.3.2. При инфекционном керато-конъюнктивите проводят вакцинацию животных вакциной, изготовленной из оболочек М. bovis.
Местно применяют с профилактической целью порошок сульфатизола, мази с антибиотиками, аэрозоль берлицетина, глазные пленки с сульфапиридазином натрия 2—3 раза в течение месяца. Обработки необходимо начинать после рождения телят и в течение пастбищного периода.
6.3.3. При инфекционном ринотрахеите необходимо проводить вакцинацию молодняка «крупного рогатого скота согласно инструкции ассоциированной вакциной против ИРТ и парагриппа.
Применение глазных пленок с профилактической целью путем введения их в конъюнктивальный мешок начинают с 20-дневного /возраста, а также и телятам I , II и III периодов выращивания 1—2 раза в месяц.
6.3.4. При телязиозе в неблагополучных хозяйствах необходимо проводить протйвотелязиозные обработки 3 раза в год в следующие сроки: первую осеннюю профилактическую дегельминтизацию в октябре-ноябре, вторую (весеннюю профилактическую дегельминтизацию в апреле-начале май, третью летнюю, лечебно-профилактическую с июля, в средней полосе и степных и южных районах с конца мая.
Применение противотелязиозных обработок в весеннелетний и осенний периоды имеет целью воздействие на телязий в имагинальной и личиночных стадиях и, тем самым, предотвращение возможности заражения промежуточных хозяев — мух и дальнейшего распространения инвазии.
Для дегельминтизации применяют водный раствор дитразина цитрата 1 : 1,5 в дозе 12—17 мт/кг, В1водят однократно в периорбитальное пространство под кожу век. Используют также ихтиол, лизол и нафталин на рыбьем жире в 3%-ной концентрации, тимол 1%-ный, 5%-ный фтористый натрий, ГЛП с дитразином путем введения их в конъюнктивальный мешок с интервалом 7—8 дней.
Необходимо с момента появления мух и до исчезновения их кожу животных в области головы опрыскивать 3%-ной эмульсией гполихоторпинена с добавлением 1 % хлорофоса, 0,6%-ной водной эмульсией трихлорметафоса-3, 0,4%-ным раствором тимола с интервалом 2—3 дня.